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HEK-293-6e細胞培養
使用F17+L谷氨酰胺培養液,37℃ 下置于5%CO2培養箱中。待細胞融合至80%,用0.25%胰酶消化傳代后接種(細胞密度5 XlO4)于培養瓶或孔板,待細胞融合至約70%后用于實驗。
細胞培養方法如下:
1.貼壁細胞細胞換液:
1)吸光培養瓶中的培養液。
2)用1xD-hank`s洗一次。
3)加入適量的新鮮培養液,接種于新的培養瓶內,放入培養箱內培養。
2.懸浮細胞換液
1)吸光培養瓶中的培養液放入15ml離心管中離心1500rpm 5min。
2)細胞沉淀用1xD-hank`s洗一次。
3)加入適量的新鮮培養液,接種于新的培養瓶內,放入培養箱內培養。
3.細胞傳代(貼壁細胞傳代采用胰酶消化法,常用消化液為0.25%的胰蛋白液)
1)吸光培養瓶中的培養液。
2)用1xD-hank`s洗一次。
3)加入0.5ml-1ml 0.25%的胰蛋白酶液(以消化液能覆蓋整個瓶底為準)。
4)靜止2-10分鐘(顯微鏡下動態監測)。
5)吸去胰蛋白酶液,加入培養基。
6)用吸管吸取瓶內培養液,反復吹打瓶壁細胞,形成細胞懸液。
7)吸取1/5-1/10細胞懸液接種于新的培養瓶內。
8)加入適量的新鮮培養液,接種于新的培養瓶內,放入培養箱內培養。
4.細胞的凍存:
1)預先配制凍存液:90%胎牛血清+10%DMSO
2)取對數期生長細胞經胰酶消化后加入培養液終止胰酶反應,離心(1500rpm 5min)去上清留沉淀加適量凍存液,用吸管吸打制成細胞懸液(1 XlO5-5X106/ml)
3)加入1ml細胞懸液于凍存管中,密封后標記凍存細胞名稱和凍存日期。
5.細胞復蘇:
1)從液氮中取出凍存管,迅速投入37度-38度水浴中
2)使其融化5min內用培養液稀釋至原液體的10倍以上,低速離心1500rpm 5min
3)去上清,加入培養液,細胞轉入培養器皿中進行培養
如果培養基還未到,我們建議離心,離心后分別收集細胞和培養基。取5ML培養基重懸細胞沉淀。接種于T25培養瓶中。